Подробное описание процесса плазмолиза в луке

Описание QIDDYCOME Цифровой микроскоп TM-100

Основа набора — инновационный цифровой микроскоп, сочетающий в себе передовые технологии цифровых микроскопов профессионального класса и простоту в использовании.

  • цветным ЖК-экраном (размер 3,5 дюйма),
  • встроенной цифровой камерой (разрешение 2,5 Мпикс) для быстрого и качественного создания фотоснимка, серии снимков и даже видеоклипов,
  • удобным предметным столиком (88х88 мм) с прижимными планками,
  • оперативной памятью (объем 512 Мб),
  • USB-кабелем для подключения к компьютеру.
  • фото- и видеосъемка,
  • просмотр имеющихся снимков и видеофайлов.
  • При проведении лабораторной работы «Изучение строения и передвижения инфузории — туфельки» использую видеосъемку. Цель: сформировать умение проводить опыт использованием цифрового микроскопа, проводить наблюдение и объяснять полученные результаты.Изучить внешнее и внутреннее строение инфузории-туфельки. Заранее выращиваем культуру инфузории – туфельки. Движение инфузорий демонстрируется на экране. Внешнее и внутреннее строение изучаем по сделанным фотографиям. Возможно, рассмотреть и отдельные органоиды, обеспечивающие жизнь данному животному: на одних фото хорошо заметны ядра, на других – сократительные вакуоли, на следующих – движение ресничек.

    Лабораторная работа по изучению плодовой мухи дрозофилы так же успешно проходит с использование цифрового микроскопа. Цель занятия:познакомить с внешним строением дрозофилы, половым диморфизмом, мутационными изменениями.Дрозофила удобный объект генетических исследований. Она легко размножается в лабораторных условиях, имеет короткий цикл развития, исключительно плодовита, обладает четко выраженными морфологическими признаками. Благодаря большому числу спонтанных и индуцированных мутантных рас, часто характеризующихся четким проявлением измененных признаков, небольшому числу хромосом она может служить модельным объектом при проведении ряда практических работ

    Познавательные опыты с данным набором будут интересны и детям, и взрослым. Особенно полезен набор для учащихся средней школы. Опыты можно проводить в урочное и внеурочное время, использовать в домашних условиях.

    Источник: http://www.openclass.ru/node/279376

    Ганчарова О.С. Куравский М.Л.

    Методическое руководство к выполнению практических заданий всероссийских олимпиал школьников по биологии

    Осмос и осмотические явления. Осмотическое давление

    Осмосом называют диффузию воды через полупроницаемую мембрану из раствора с низкой концентрацией растворенного вещества в раствор с высокой концентрацией растворенного вещества. Явление осмоса может быть продемонстрировано на классическом примере. Представим сосуд, разделенный на две части полупроницаемой мембраной, в одной половине сосуда находится более концентрированный раствор соли (к примеру, 1M NaCl), в другой – менее концентрированный (0,01 M NaCl). В начале опыта (рис. 12A) объем раствора в каждой из половин одинаков, а концентрация соли различается.

    Если приложить к столбу жидкости в отсеке с большей начальной концентрацией соли давление (красная стрелка на рисунке 12B), диффузия воды замедлится. Давление, при котором диффузия жидкости прекращается, называется осмотическим давлением. Описанным образом осмотическое давление измеряется для раствора, к которому прикладывается давление (то есть в описанном примере измерено осмотическое давление раствора с большей начальной концентрацией соли). Осмотическое давление – очень важная величина, характеризующая осмос. В физической химии осмотическое давление обозначается буквой ? и вычисляется по простой формуле:

    Осмотическое давление жидкостей живых организмов может быть очень значительным. К примеру, осмотическое давление жидкостей человеческого тела в среднем равно семи (!) атмосферам. Именно за счет осмотического давления вода из корней деревьев доходит до листьев.

    Если приложить к столбу жидкости в указанном отсеке сосуда давление, большее осмотического, процесс осмоса «пойдет вспять» — начнется переход растворителя из отсека с большей концентрацией соли в отсек с меньшей концентрацией соли. Это явление носит название обратного осмоса. Обратный осмос находит широкое применение в производстве фильтров для очистки питьевой воды.

    Если взять клетки животных, например, эритроциты, и поместить их в физиологический раствор, морфология клеток не изменится, так как физиологический раствор изотоничен плазме крови (содержит физиологическое количество солей). Если же поместить эритроциты в гипертонический раствор, например, в раствор с концентрацией соли 10%, вода по закону осмоса будет выходить из цитоплазмы (как из жидкости с меньшей концентрацией соли) в окружающий раствор, в результате чего эритроциты сморщатся. При помещении эритроцитов в гипотоническую среду (дистиллированную воду), вода будет проникать внутрь клеток, «стараясь» уравновесить концентрации солей внутри и вне клетки. В конце концов, эритроциты лопнут, их содержимое высвободится в воду, превратив содержимое пробирки в так называемую «лаковую кровь» — прозрачную красную жидкость. Этот известный эксперимент показывает, что клетки животных не окружены плотной оболочкой и вынуждены существовать в очень ограниченном диапазоне концентраций солей. Клетки пресноводных простейших, не обладающих достаточно плотной оболочкой (амебы, инфузории) справляются с проблемой переизбытка воды с помощью сократительных вакуолей, постоянно «вычерпывающих» лишнюю воду за пределы клетки.

    Заметим, что клетки растений обычно находятся в гипотонических условиях, поскольку содержимое растительной клетки богато осмотически активными веществами, большая часть которых (органические кислоты, сахара, солей, низкомолекулярных пигментов) входят в состав клеточного сока, расположенного внутри вакуоли. Вакуоли – органеллы, присущие растительным клеткам. Мембрана, ограничивающая вакуоль, называется тонопластом, и по своим свойствам сходна с плазмалеммой. Это мембрана, обладающая избирательной проницаемостью и способностью к активному транспорту. Осмотически активные вещества с целью запасения или утилизации переносятся в вакуоль с помощью белков-каналов и переносчиков, обратно эти вещества в большинстве своем не выходят. Таким образом, с помощью избирательного активного транспорта в клетке создается градиент осмолярности – клеточный сок гипертоничен по отношению к цитоплазме, а цитоплазма гипертонична по отношению к окружающей среде. Вода извне поступает в клетку, «стремясь» уравнять концентрации осмотически активных веществ, давит на клеточную стенку изнутри, обеспечивая тургор.

    Тургор – показатель оводненности и состояния водного режима растений. Снижением тургора сопровождаются процессы, увядания и старения клеток. Именно за счет тургора органы растений находятся в выпрямлено, упругом состоянии. Увядание растения – не что иное, как понижение тургорного давления его клеток.

    Неверно думать, что тургесцентность свойственна только клеткам растений или бактерий, обладающих клеточной стенкой. Тургор есть и у животных клеток, но он невелик из-за гораздо меньшей прочности плазмалеммы по сравнению с клеточной стенкой (именно из-за наличия тургора, а также из-за эластичности цитоплазматической мембраны, эритроциты в гипотонических условиях разрушаются не сразу, а после некоторого набухания). При разрушении клеточных стенок растительных клеток тургесцентность последних резко падает, и в гипотонических условиях обнаженные протопласты клеток растений ведут себя так же, как клетки млекопитающих.

    Плазмолиз. Виды плазмолиза

    Исследование плазмолиза позволяет сделать выводы о проницаемости мембран растительных клеток для различных веществ, о величине нормального тургорного давления. Плазмолиз чаще всего исследуют на препаратах, в которых клетки расположены в один или несколько слоев и удобны для изучения. К таким препаратам можно отнести кожицу лука, листья элодеи, эпидермис листьев высших растений.

    В зависимости от вязкости цитоплазмы, от разницы между осмотическим давлением клетки и внешнего раствора, а, следовательно, от скорости и степени потери воды цитоплазмой, различают плазмолиз выпуклый, вогнутый, судорожный иколпачковый .

    В начале протопласт отстает от клеточной стенки лишь в отдельных местах, чаще всего в уголках. Плазмолиз такой формы называют уголковым (рис. 13Б). Затем протопласт продолжает отставать от клеточных стенок, сохраняя связь с ними в отдельных местах, поверхность протопласта между этими точками имеет вогнутую форму. На этом этапе плазмолиз называют вогнутым (рис. 13В). Места, в которых сохраняется связь протопласта с клеточной стенкой, отражают расположение групп плазмодесм в клетке. Постепенно протопласт отрывается от клеточных стенок по всей поверхности и принимает округлую форму. Такой плазмолиз носит название выпуклого (рис. 13Г). Если у протопласта связь с клеточной стенкой в отдельных местах сохраняется, то при дальнейшем уменьшении объема в ходе плазмолиза протопласт приобретает неправильную форму. Протопласт остается связанным с оболочкой многочисленными нитями Гехта. прикрепляющимися к клеточной стенке в местах расположения групп плазмодесм. Такой плазмолиз носит название судорожного (рис. 13Д).

    Рис. 13. Плазмолиз растительной клетки: А – клетка в состоянии тургора; Б – уголковый; В – вогнутый; Г – выпуклый; Д – судорожный. 1 — оболочка, 2 — вакуоль, 3 — цитоплазма, 4 — ядро, 5 — нити Гехта.

    Оба описанных вида плазмолиза обычно предваряются вогнутым плазмолизом.

    Исследование колпачкового плазмолиза в раствора роданида калия.

    Задание:

    Ход работы:

    На чистое предметное стекло капается 1M раствор роданида калия KSCN (или нитрата калия KNO3), в каплю кладется кожица лука или лист элодеи, препарат накрывается покровным стеклом и рассматривается под микроскопом на большом увеличении.

    Плазмолизированные клетки обычно остаются живыми, особенно если клетка провела в состоянии плазмолиза короткое время. При помещении живой плазмолизированной клетки в воду или гипотонический раствор происходит деплазмолиз – клетка вернется в состояние тургора и приобретет нормальный вид.

    В условиях гипотонического раствора, концентрация осмотических веществ в котором меньше, чем в клеточном соке, вода из внеклеточной среды будет поступать внутрь клетки (а там – внутрь вакуоли, «стараясь» уменьшить концентрацию клеточного сока). В результате увеличения объема вакуоли повысится давление клеточного сока на цитоплазму, которая, в свою очередь, которая начнет приближаться к стенкам клетки, пока не примет первоначальное положение. Деплазмолиз обычно происходит медленнее, чем плазмолиз.

    Сравнение проницаемости клеточных мембран для различных веществ

    По интенсивности плазмолиза и по времени наступления деплазмолиза можно оценить проницаемость мембраны для тех или иных веществ.

    Взять два чистых предметных стекла, на одно капнуть 1M раствор сахарозы, на другое – 1M мочевину, в каждую каплю поместить лист элодеи (или кожицу лука, или препарат эпидермиса листа растения), накрыть покровным стеклом. Через пять минут рассмотреть препараты под микроскопом, сначала на малом, потом на большом увеличении. Найти участки с плазмолизированными клетками, зарисовать клетки в состоянии плазмолиза. Отметить время начала плазмолиза. Оставить препараты на полчаса, затем снова рассмотреть их под микроскопом. Отметить, в каком препарате произошел деплазмолиз, зарисовать клетки из обоих препаратов.

    Разделение фотосинтетических пигментов методом тонкослойной хроматографии

    Разделить фотосинтетические пигменты, входящие в состав предложенной вытяжки, методом тонкослойной хроматографии (на бумаге), определить пигменты на полученной хроматограмме.

    Методика проведения тонкослойной хроматографии (на бумаге)

    Полоску хроматографической бумаги шириной 2-3 см и длиной, соответствующей высоте хроматографической камеры, положить на чистую поверхность стола и нанести карандашом линию старта на расстоянии 2 см от края. Аккуратно перенести небольшую порцию вытяжки с помощью шприца или капилляра на линию старта (диаметр пятна на должен превышать 1 см ). После полного высыхания повторить процедуру 3-4 раза с целью повышения концентрации пигментов. Поместить полоску хроматографической бумаги в хроматографическую камеру, на дне которой налит неполярный растворитель (бензин, гексан). При этом пятно пигментов должно находится выше уровня растворителя. Плотно закрыть хроматографическую камеру (для предотвращения высыхания растворителя с хроматографической бумаги, которое приводит к увеличеснию размытости пятен), подождать, пока расстояние между фронтом растворителя и верхним краем полоски бумаги не достигнет 2-3 см. Вынуть полученную хроматограмму из хроматографической камеры и сразу же отметить на ней карандашом положение фронта растворителя и пятнен пигментов.

    Таким образом, наибольший пробег соответствует неполярным пигментам, наименьший – полярным. Фотосинтетические пигменты распределяются в следующем порядке (начиная от фронта растворителя): каротины (светло-желтые), ксантофиллы (желтые), феофитин (серый), хлорофилл a (сине-зеленый), хлорофилл b (желто-зеленый), лютеин (один из ксантофиллов, ярко-желтый) – рис. 15-17. Феофитин является ассоциированным со II фотосистемой переносчиком электронов, но в значительно большем количестве образуется при разрушении хлорофиллов. Большое количество феофитина на хроматограмме говорит о том, что предложенная вытяжка пигментов была несвежей.

    Кожица лука

    Если рассматривать микропрепарат кожицы лука под микроскопом. то можно увидеть, что она представляет собой видоизмененный эпидермис листа. Так как луковица растет в темных местах, где нет доступа света, в ее клетках нет хлоропластов. Заменой хлоропластам служат лейкопласты – прозрачные пластиды. Сама луковица является видоизмененным побегом, имеющим уплощенное донце (стебель) и толстые сочные чешуи (листья).

    При микроскопии хорошо различимы особенности строения кожицы лука. Ее клетки имеют удлиненную форму, некоторые из них кажутся прямоугольными. Четко очерчены границы клеток, образованные плотными бесцветными оболочками, обеспечивающими постоянство формы клеток. Благодаря особенностям строения клеточных оболочек, осуществляется транспорт воды с растворенными минеральными и органическими веществами. Так как большую часть внутреннего простанства клеток заполняет крупная центральная вакуоль, заполненная клеточным соком, клетки при микроскопии выглядят бесцветными. Вакуоль представляет собой резервуар для воды и питательных веществ в клетке кожицы чешуи лука. Кроме запаса питательных веществ, вакуоль включает растворы минеральных солей и органических кислот, пигменты и другие продукты обмена веществ клетки растения. Ядро и цитоплазма клетки оттеснены к периферии крупной вакуолью, вследствие чего цитоплазма оказывается разделенной на отдельные участки. Такие тяжи цитоплазмы определяются при большом увеличении под цифровым микроскопом как узкие полосы, расходящиеся радиально от ядра к периферии. Характерна зернистая структурированность тяжей цитоплазмы, что объясняется наличием различных органелл в ней. Поэтому клетки кожицы лука имеют своеобразный рисунок при микроскопии.

    В ходе лабораторного опыта можно изучить явление плазмолиза в клетках кожицы лука с целью понять суть одного из главных свойств мембраны клетки – ее полупроницаемости. Для этого после приготовления препарата кожицы лука наносят на него раствор поваренной соли (гипертонический раствор физиологически безопасного соединения). Это действие провоцирует начало плазмолиза. Плазмолиз представляет собой отделение от плотной клеточной оболочки прилегающего слоя цитоплазмы из-за потери ею воды. Эта реакция характеризуется обратимостью. Деплазмолиз – это увеличение объема цитоплазмы до начального значения. Но если плазмолиз длительный и глубокий, то деплазмолиз не осуществляется из-за нарушения проницаемости мембраны клетки. В ходе плазмолиза вначале трансформации подвергаются крайние клетки препарата кожицы лука, затем вовлекаются остальные. При этом протопласты сжимаются и отделяются от стенок клеток кожицы лука. Причиной плазмолиза является диффузия воды через мембрану по направлению из области раствора с низкой концентрацией солей к участкам с более высокой. С целью произвести деплазмолиз заменяют гипертонический раствор соли на воду (гипотонический раствор).

    Источник: http://beaplanet.ru/mikroskopiya/kozhica_luka.html

    Научно-познавательный набор "Лаборатория юного биолога" позволяет создать идеальную научную лабораторию не только на уроке, но и в домашних условиях. С его помощью можно заглянуть в таинственный и интересный мир микроорганизмов, увидеть крошечные живые клетки, из которых состоят все растения, животные и ткани организма человека. Кроме того, занимаясь с набором, можно понять, как устроены предметы неживой природы: бумага, синтетические ткани, кристаллики льда и вода, деньги, и т.д.

    Аппарат оснащен:

  • поворотной объективной турелью с тремя ахроматическими объективами (40х, 100х и 400х, при видеосъемке до 1600 крат),
  • двумя светодиодными осветителями (нижний — для исследования прозрачных объектов, верхний — для твердых непрозрачных),
  • диском с шестью цветными фильтрами (для исследования прозрачных или бесцветных объектов),
  • разъемом для карт памяти стандартом SD или ММС,
  • Микроскоп может работать в режимах:

  • наблюдение,
  • ВАЖНО: для работы с микроскопом компьютер не обязателен!

    Для подготовки объектов для исследований в наборе предусмотрены инструменты: препаровальные иглы, пинцет, пипетка, предметные и покровные стекла, а также специальный нож Microtom — для нарезки тонких слоев исследуемых предметов.

    С помощью подробной инструкции с цветными иллюстрациями можно провести более 30 увлекательных опытов, используя входящие в комплект готовые препараты (нога комнатной мухи, древесина сосны, стебель хлопчатника, кожица лука, стебель двудольного дерева, дрожжи, гуммиарабик, морская соль и яйца рачков-артемий). Для изучения жизнедеятельности морских рачков в наборе предусмотрен специальный инкубатор для их выращивания.

    Наличие одного цифрового микроскопа на столе у учителя даёт возможность продемонстрировать микропрепарат одновременно всем учащимся (выводя изображение на экран) и обратить внимание на детали, что невозможно сделать при использовании традиционных микроскопов.

    Так, лабораторную работу «Плазмолиз и деплазмолиз в клетках кожицы лука» провожу с использованием цифрового микроскопа. Для этого помещаю на предметное стекло в каплю воды и добавляю раствора поваренной соли. В течение урока можно пронаблюдать движение воды и изменения, происходящие в клетке, т.е. отделение протопласта от клеточной стенки в гипертоническом растворе – плазмолиз. Ход эксперимента учащиеся наблюдают на экране и делают выводы, самостоятельно дают определения процессам плазмолиза и деплазмолиза, объясняют причину происходящего. Одним из приятных моментов в работе с цифровым микроскопом для учителя является экономия времени: не нужно доставать микроскоп из шкафа и настраивать его. Микроскоп постоянно подключен к компьютеру. Достаточно положить микропрепарат на предметный столик и навести резкость.

    Методическое руководство к выполнению практических заданий всероссийских олимпиал школьников по биологии Физиология растений

    Физиология растений

    Задания по физиологии растений, как правило, попадаются на практическом туре 10-11-м классам. Обычно предлагают работы, связанные с осмотическими явлениями в растительных клетках (плазмолиз и деплазмолиз), работой устьиц или разделением фотосинтетических пигментов методом хроматографии.

    Осмотические явления в растительной клетке. Плазмолиз

    Все биологические мембраны представляют собой полупроницаемые мембраны, так как в силу своей структуры они пропускают одни вещества (воду, газы), а другие (крупные заряженные молекулы, к примеру, глюкозу) – нет. На самом деле, конечно, в мембране клетки есть переносчики для глюкозы, но они строго регулируются и не позволяют веществу проходить в клетку бесконтрольно; то же самое можно сказать про каналы для ионов. Избирательность транспорта веществ через мембрану считается одним из признаков жизни на клеточном уровне. Мертвая клетка не контролирует поступление и веществ внутрь себя и выведение веществ наружу. Тем не менее, из-за липидной природы даже мембрана мертвой клетки остается полупроницаемой, хотя и менее «избирательной», чем мембрана живой.

    Избирательность транспорта через проницаемую мембрану ведет к возникновению в клетке осмотических явлений. Осмотическими называют явления, происходящие в системе, состоящей из двух растворов, разделенных полупроницаемой мембраной. В растительной клетке роль полупроницаемых пленок выполняют: плазмалемма – мембрана, разделяющая цитоплазму и внеклеточную среду, и тонопласт – мембрана, разделяющая цитоплазму и клеточный сок, представляющий собой содержимое вакуоли растительной клетки.

    ис. 12 . Схема, демонстрирующая явление осмоса

    Ионы Na + и Cl -. на которые соль, будучи сильным электролитом, распадается сразу после попадания в раствор, не могут пройти через мембрану, в отличие от молекул воды. Неверно думать, что вода из отсека с большей концентрацией соли не переходит в отсек с меньшей концентрацией. Вода идет через мембрану в обе стороны, но интенсивность перехода разная. Известно, что ионы в воде гидратированы – покрыты гидратной «шубой». Вода распадается на ионы H + и OH — которые электростатически связываются с ионами хлора и натрия, соответственно. Так как в «правой» половине сосуда (см. рис. 12) концентрация Na + и Cl — больше, соответственно больше воды требуется для гидратирования этих ионов. В связи с этим вода интенсивнее переходит из отсека с малой концентрацией соли в отсек с большой концентрацией. Поскольку вода будет перетекать из разбавленного раствора в концентрированный быстрее, чем в обратном направлении, в целом движение воды между двумя растворами будет идти в одну сторону. В результате уровень раствора в первом понижается, а в последнем повышается; концентрация соли в отсеках выравнивается (рис 12B). Заметим, что изменение объема жидкости и концентрации соли связано с перераспределением только молекул воды, но не соли, так как мембрана непроницаема для ионов натрия и хлора.

    где C – концентрация раствора, R – универсальная газовая постоянная (8,314 ), T – абсолютная температура (K). Попробуем проанализировать это выражение. R – просто постоянная величина, константа, которая никак не влияет на осмотическое давление. Температуру тоже можно принять за постоянную величину, поскольку мы рассматриваем живые системы, которые существуют в узком температурном диапазоне (мы не будем принимать во внимание бактерий-экстремальных термофилов). Следовательно, по большому счету, осмотическое давление раствора зависит только от его концентрации, причем зависимость линейная: чем больше концентрация соли (или сахара, или другого вещества, не проходящего через полупроницаемую мембрану – осмотически активного вещества ) в растворе, тем больше его осмотическое давление. В нашем случае осмотическое давление раствора поваренной соли с концентрацией 0,01M гораздо меньше, чем осмотическое давление раствора с концентрацией 1M.

    Обычно при описании живых систем, биологических жидкостей и других растворов не указывают значение осмотического давления, пользуясь относительной характеристикой. Принято описывать осмотическое давление растворов относительно интересующей нас жидкости (к примеру, крови, цитоплазмы, клеточного сока). Если осмотическое давление раствора больше, чем давление «нашей» жидкости, раствор называют гипертоническим ; если меньше – гипотоническим. если такое же – изотоническим. В этом определении слова «осмотическое давление» смело можно заменить на «концентрация осмотически активного вещества», так как мы уже выяснили, что осмотическое давление раствора зависит от концентрации линейно. В приведенном выше примере раствор с концентрацией 0,01M NaCl является гипотоническим по отношению к раствору с концентрацией 1M NaCl. Широко используемый в медицинской практике физиологический раствор, является изотоническим по отношению к плазме крови. Концентрация солей в физиологическом растворе и плазме крови одинакова, а значит, одинаково и осмотическое давление. Заметим, что существует несколько типов физиологических растворов с одинаковым осмотическим давлением и немного отличающимся составом солей – растворы Рингера – Локка, Рингера – Тироде и Кребса – Рингера.

    Тургор растительной клетки

    Если поместить взрослые клетки растений (в составе ткани, к примеру, эпидермиса) в гипотонические условия, они не лопнут, поскольку каждая клетка растения окружена более или менее толстой клеточной стенкой. Последняя служит ригидной структурой, не позволяющей притекающей воде разорвать клетку. Если бы клеточная стенка и плазматическая мембрана клетки могли растягиваться, вода входила бы в клетку до тех пор, пока концентрация осмотически активных веществ снаружи и внутри клетки не выровнялась бы. В реальности клеточная стенка – прочная нерастяжимая структура, и в гипотонических условиях входящая в клетку вода давит на клеточную стенку, плотно прижимая к ней плазмалемму. Давление протопласта изнутри на клеточную стенку называется тургорным давлением. Говорят, что клетки растений обладают тургесцентностью. Тургорное давление препятствует дальнейшему поступлению воды в клетку. Состояние внутреннего напряжения клетки, обусловленное высоким содержанием воды и развивающимся давлением содержимого клетки на ее оболочку носит название тургора .

    Под плазмолизом понимается отделение протопласта клетки от оболочки под действием на клетку гипертонического раствора. Плазмолиз характерен главным образом для клеток растений, обладающих жесткой клеточной стенкой. Животные клетки при помещении в гипертонический раствор, как было указано выше, теряя воду, сморщиваются и уменьшаются в размерах. Плазмолиз растительной клетки аналогичен этому процессу, но сморщивание протопласта происходит внутри клеточной стенки. В нормальных условиях плазмалемма растительной клетки плотно прижата к клеточной стенке изнутри под действием тургорного давления. При помещении клетки в раствор, концентрация осмотически активных веществ в котором больше концентрации клеточного сока, то скорость диффузии воды из клеточного сока будет превышать скорость диффузии воды в клетку из окружающего раствора. Вследствие выхода воды из клетки объем клеточного сока сокращается, тургор уменьшается. Уменьшение объема клеточной вакуоли сопровождается отделением цитоплазмы от оболочки. В процессе плазмолиза протопласт теряет воду, уменьшается в размерах и отделяется от клеточной стенки.

    Известно, что живые ткани растения в какой-то мере могут быть рассмотрены как симпласты (синцитии), поскольку протопласты соседних клеток сообщаются между собой через плазмодесмы – цитоплазматические нити, располагающиеся в канальцах, пронизывающих клеточную стенку. Плазмодесмы располагаются в клетке группами на месте так называемых первичных поровых полей. Роль плазмодесм заключается в обеспечении передачи раздражений и передвижения веществ от клетки к клетке. Протопласт как бы закреплен на клеточной стенке в местах расположения плазмодесм, поэтому при уменьшении объема клетки в процессе плазмолиза протопласт дольше всего остается прикрепленным к клеточной стенке именно в местах плазмодесм.

    Изучение форм плазмолиза на препарате листа элодеи

    В ходе плазмолиза форма плазмолизированного протопласта меняется. Рассмотрим плазмолиз клетки листа элодеи, помещенного в гипертонический раствор. Для наблюдения плазмолиза нужно сделать временный препарат листа элодеи, для начала поместив лист в воду и накрыв покровным стеклом. Клетки листа следует рассматривать на большом увеличении. Вода – гипотоничная относительно содержимого клетки среда, и пока лист элодеи находится в воде, клетки находятся в состоянии тургора, их протопласт плотно прижат тургорным давлением к клеточной стенке (рис. 8A). При этом на микропрепарате не видно мест, где находятся плазмодесмы (плазмодесмы – объект электронномикроскопического исследования, их средний диаметр составляет 0,3-0,4 нм). Для того чтобы вызвать плазмолиз в клетках, нужно сменить внеклеточную среду на гипертоничную. С этой целью препарат снимают со столика микроскопа, с одного бока покровного стекла, прикрывающего лист элодеи, помещают каплю гипертонического раствора так, чтобы она касалась покровного стекла. С другой стороны стекла аналогично помещают кусочек фильтровальной бумаги. Из-за возникающих капиллярных сил вода, находящаяся под стеклом, впитывается бумагой, втягивая гипертонический раствор под стекло. После замены раствора нужно немного подождать (5 минут), затем наблюдать формы плазмолиза, переходящие одна в другую.

    Приготовить временный препарат кожицы лука, листа элодеи либо эпидермиса листа высшего растения. Вплотную к покровному стеклу нанести на предметное стекло каплю раствора соли — более концентрированного, чем раствор веществ, содержащихся в вакуолях. С другой стороны на предметное стекло вплотную к покровному стеклу положить полоску фильтровальной бумаги, которую нужно держать до тех пор, пока раствор соли не войдет под покровное стекло, заменив воду. Через 5-10 минут обратить внимание на отрыв цитоплазмы от оболочки клеток, т.е. плазмолиз.

    Влияние разных агентов, вызывающих плазмолиз, на форму плазмолиза

    Форма плазмолиза зависит не только и не столько от стадии процесса (очень редко удается проследить возникновение всех форм плазмолиза на одном и том же препарате), как от свойств цитоплазмы клетки: ее вязкости, гидрофильности, коллоидного состояния (гель или золь). Те или иные свойства цитоплазмы могут быть модулированы агентами, вызывающими плазмолиз.

    Исследовать влияние ионов натрия и кальция на форму плазмолиза.

    Взять два чистых предметных стекла, капнуть на одно из них 1M KNO3. на другое – 1M Ca(NO3)2, в каждую каплю поместить лист элодеи (или кожицу лука, или препарат эпидермиса листа растения), накрыть покровным стеклом. Через пять-десять минут рассмотреть препараты под микроскопом, сначала на малом, потом на большом увеличении. Найти участки с плазмолизированными клетками, зарисовать клетки в состоянии плазмолиза.

    Результат:

    В растворе нитрата калия возникает главным образом выпуклый плазмолиз (см. рисунок 13Г), в растворе нитрата кальция – судорожный плазмолиз (см. рисунок 13Д).

    Ион калия (очень медленно по сравнению с водой проходящий через мембрану за счет наличия калиевых каналов) уменьшает вязкость цитоплазмы, способствуя ее отделению от клеточной стенки, вследствие чего возникает выпуклый плазмолиз. Ион кальция, напротив, повышает вязкость цитоплазмы, увеличивая силы ее сцепления с клеточной стенкой, что вызывает преимущественно судорожный плазмолиз.

    Вызвать возникновение колпачкового плазмолиза в клетках растений. Объяснить, в связи с чем возникает указанный тип плазмолиза.

    Результат: При длительном нахождении клеток в растворе роданида или нитрата калия (15 мин. и более) цитоплазма набухает, там, где протопласт не касается клеточных стенок, вокруг вакуолей образуются так называемые колпачки цитоплазмы (рис. 14).

    Рис. 14. Колпачковый плазмолиз в клетке листа элодеи, длительно находящейся в растворе KNO 3 . Белым показана вакуоль, ограниченная коричневатыми колпачками цитоплазмы.

    Вывод:

    Колпачковый плазмолиз возникает при разной проницаемости плазмалеммы и тонопласта: ионы калия, медленно проникают в цитоплазму через калиевые каналы, вызывая ее набухание. В тонопласте таких каналов не имеется, и поэтому объем вакуоли не увеличивается.

    Деплазмолиз

    исследовать проницаемость мембран растительной клетки для сахарозы и мочевины (карбамида).

    В условиях гипертонического раствора как сахарозы, так и мочевины в клетках возникает плазмолиз, поскольку оба указанных вещества растворимы в воде и осмотически активны. В растворе сахарозы деплазмолиз не возникает, так как плазмалемма непроницаема для крупных молекул сахаров и раствор сахарозы остается гипертоничным относительно содержимого клетки с течением времени. В растворе мочевины по прошествии некого промежутка времени происходит деплазмолиз, так как плазмалемма обладает проницаемостью для мочевины (хотя меньшей, чем для воды, поэтому плазмолиз изначально возникает), и постепенно мочевина проходит в клетку. За ней внутрь клетки следует вода, обеспечивающая тургорное давление – возникает деплазмолиз.

    Для сравнительной оценки плазмолиза в тканях существует 2 метода: пограничного плазмолиза и плазмометрический. Первый метод, разработанный Гуго Де Фризом (1884), заключается в погружении тканей в растворы с различной концентрацией осмотичнески активного вещества и установлении той концентрации, при которой плазмолизируется 50% клеток. При плазмометрическом методе после плазмолиза измеряют относительный объем клетки и протопласта и по концентрации раствора вычисляют осмотическое давление клетки (по соответствующим формулам).

    Что делать:

    Провести разделение, следуя предложенной методике. На полученной хроматограмме обвести карандашом и подписать пятна пигментов, отметить линию фронта и вычислить значения Rf. Объяснить полученный результат.

    Механизм разделения пигментов

    Разделение пигментов основано на различие их растворимостей в подвижной и неподвижной фазах. В качестве подвижной фазы обычно используют неполярные растворители (бензин, гексан), в качестве подвижной фазы выступает полярный растворитель – вода, адсорбированная на волокнах целлюлозы, из которой состоит бумага. При проведении хроматографии подвижная фаза движется по бумаге под действием капиллярных сил. Чем выше отношение растворимостей пигмента в подвижной и неподвижной фазах, тем большее расстояние он проходит.

    Источник: http://refdb.ru/look/1473736.html

    фЕНБ: пУНПФЙЮЕУЛЙЕ СЧМЕОЙС Ч ЛМЕФЛЕ

    нБФЕТЙБМЩ. мЙУФШС ЬМПДЕЙ ЛБОБДУЛПК (Elodea canadensis ); 6-8% ТБУФЧПТ УЕМЙФТЩ ( KNO 3 ).

    цЙЪОЕДЕСФЕМШОПУФШ ЛМЕФЛЙ ИБТБЛФЕТЙЪХЕФУС ОЕРТЕТЩЧОП РТПФЕЛБАЭЙНЙ Ч ОЕК РТПГЕУУБНЙ ПВНЕОБ ЧЕЭЕУФЧ, РТЙЮЕН ГЙФПРМБЪНБ ЙЪВЙТБФЕМШОП ТЕБЗЙТХЕФ ОБ ЧПЪДЕКУФЧЙЕ ТБЪОЩИ ЖБЛФПТПЧ ЧОЕЫОЕК УТЕДЩ. ч РПЗМПЭЕОЙЙ Й ЧЩДЕМЕОЙЙ ЧЕЭЕУФЧ ВПМШЫХА ТПМШ ЙЗТБАФ РТПГЕУУЩ ДЙЖЖХЪЙЙ Й ПУНПУБ. пУНПФЙЮЕУЛЙНЙ ОБЪЩЧБАФ СЧМЕОЙС, РТПЙУИПДСЭЙЕ Ч УЙУФЕНЕ, УПУФПСЭЕК ЙЪ ДЧХИ ТБУФЧПТПЧ, ТБЪДЕМЕООЩИ РПМХРТПОЙГБЕНПК НЕНВТБОПК. ч ТБУФЙФЕМШОПК ЛМЕФЛЕ ТПМШ РПМХРТПОЙГБЕНЩИ РМЕОПЛ ЧЩРПМОСАФ РПЗТБОЙЮОЩЕ УМПЙ ГЙФПРМБЪНЩ: РМБЪНБМЕННБ Й ФПОПРМБУФ.

    рМБЪНБМЕННБ — ОБТХЦОБС НЕНВТБОБ ГЙФПРМБЪНЩ, РТЙМЕЗБАЭБС Л ЛМЕФПЮОПК ПВПМПЮЛЕ. фПОПРМБУФ — ЧОХФТЕООСС НЕНВТБОБ ГЙФПРМБЪНЩ, ПЛТХЦБАЭБС ЧБЛХПМШ. чБЛХПМЙ РТЕДУФБЧМСАФ УПВПК РПМПУФЙ Ч ГЙФПРМБЪНЕ, ЪБРПМОЕООЩЕ ЛМЕФПЮОЩН УПЛПН — ЧПДОЩН ТБУФЧПТПН ХЗМЕЧПДПЧ, ПТЗБОЙЮЕУЛЙИ ЛЙУМПФ, УПМЕК, ВЕМЛПЧ У ОЙЪЛЙН НПМЕЛХМСТОЩН ЧЕУПН, РЙЗНЕОФПЧ.

    лПОГЕОФТБГЙС ЧЕЭЕУФЧ Ч ЛМЕФПЮОПН УПЛЕ Й ЧП ЧОЕЫОЕК УТЕДЕ (Ч РПЮЧЕ, ЧПДПЕНБИ) ПВЩЮОП ОЕ ПДЙОБЛПЧЩ. еУМЙ ЧОХФТЙЛМЕФПЮОБС ЛПОГЕОФТБГЙС ЧЕЭЕУФЧ ЧЩЫЕ, ЮЕН ЧП ЧОЕЫОЕК УТЕДЕ, ЧПДБ ЙЪ УТЕДЩ ВХДЕФ ДЙЖЖХОДЙТПЧБФШ Ч ЛМЕФЛХ, ФПЮОЕЕ Ч ЧБЛХПМШ, У ВПМШЫЕК УЛПТПУФША, ЮЕН Ч ПВТБФОПН ОБРТБЧМЕОЙЙ, Ф. Е. ЙЪ ЛМЕФЛЙ Ч УТЕДХ. юЕН ВПМШЫЕ ЛПОГЕОФТБГЙС УПДЕТЦБЭЙИУС Ч ЛМЕФПЮОПН УПЛЕ ЧЕЭЕУФЧ, ФЕН УЙМШОЕЕ УПУХЭБС УЙМБ — УЙМБ, У ЛПФПТПК ЛМЕФЛБ. рТЙ ХЧЕМЙЮЕОЙЙ ПВЯЕНБ ЛМЕФПЮОПЗП УПЛБ, ЧУМЕДУФЧЙЕ РПУФХРМЕОЙС Ч ЛМЕФЛХ ЧПДЩ, ХЧЕМЙЮЙЧБЕФУС ЕЗП ДБЧМЕОЙЕ ОБ ГЙФПРМБЪНХ, РМПФОП РТЙМЕЗБАЭХА Л ПВПМПЮЛЕ. рТЙ РПМОПН ОБУЩЭЕОЙЙ ЛМЕФЛЙ ЧПДПК ПОБ ЙНЕЕФ НБЛУЙНБМШОЩК ПВЯЕН. уПУФПСОЙЕ ЧОХФТЕООЕЗП ОБРТСЦЕОЙС ЛМЕФЛЙ, ПВХУМПЧМЕООПЕ ЧЩУПЛЙН УПДЕТЦБОЙЕН ЧПДЩ Й ТБЪЧЙЧБАЭЙНУС ДБЧМЕОЙЕН УПДЕТЦЙНПЗП ЛМЕФЛЙ ОБ ЕЕ ПВПМПЮЛХ ОПУЙФ ОБЪЧБОЙЕ ФХТЗПТБ (ТЙУ. 10, б). фХТЗПТ ПВЕУРЕЮЙЧБЕФ УПИТБОЕОЙЕ ПТЗБОБНЙ ЖПТНЩ (ОБРТЙНЕТ, МЙУФШСНЙ, ОЕПДТЕЧЕУОЕЧЫЙНЙ УФЕВМСНЙ) Й РПМПЦЕОЙС Ч РТПУФТБОУФЧЕ, Б ФБЛЦЕ УПРТПФЙЧМЕОЙЕ ЙИ ДЕКУФЧЙА НЕИБОЙЮЕУЛЙИ ЖБЛФПТПЧ. у РПФЕТЕК ЧПДЩ УЧСЪБОП ХНЕОШЫЕОЙЕ ФХТЗПТБ Й ХЧСДБОЙЕ.

    еУМЙ ЛМЕФЛБ ОБИПДЙФУС Ч ЗЙРЕТФПОЙЮЕУЛПН ТБУФЧПТЕ. ЛПОГЕОФТБГЙС ЛПФПТПЗП ВПМШЫЕ ЛПОГЕОФТБГЙЙ ЛМЕФПЮОПЗП УПЛБ, ФП УЛПТПУФШ ДЙЖЖХЪЙЙ ЧПДЩ ЙЪ ЛМЕФПЮОПЗП УПЛБ ВХДЕФ РТЕЧЩЫБФШ УЛПТПУФШ ДЙЖЖХЪЙЙ ЧПДЩ Ч ЛМЕФЛХ ЙЪ ПЛТХЦБАЭЕЗП ТБУФЧПТБ. чУМЕДУФЧЙЕ ЧЩИПДБ ЧПДЩ ЙЪ ЛМЕФЛЙ ПВЯЕН ЛМЕФПЮОПЗП УПЛБ УПЛТБЭБЕФУС, ФХТЗПТ ХНЕОШЫБЕФУС. хНЕОШЫЕОЙЕ ПВЯЕНБ ЛМЕФПЮОПК ЧБЛХПМЙ УПРТПЧПЦДБЕФУС ПФДЕМЕОЙЕН ГЙФПРМБЪНЩ ПФ ПВПМПЮЛЙ — РТПЙУИПДЙФ РМБЪНПМЙЪ .

    ч ИПДЕ РМБЪНПМЙЪБ ЖПТНБ РМБЪНПМЙЪЙТПЧБООПЗП РТПФПРМБУФБ НЕОСЕФУС. чОБЮБМЕ РТПФПРМБУФ ПФУФБЕФ ПФ ЛМЕФПЮОПК УФЕОЛЙ МЙЫШ Ч ПФДЕМШОЩИ НЕУФБИ, ЮБЭЕ ЧУЕЗП Ч ХЗПМЛБИ. рМБЪНПМЙЪ ФБЛПК ЖПТНЩ ОБЪЩЧБАФ ХЗПМЛПЧЩН (ТЙУ. 10, в).

    ъБФЕН РТПФПРМБУФ РТПДПМЦБЕФ ПФУФБЧБФШ ПФ ЛМЕФПЮОЩИ УФЕОПЛ, УПИТБОСС УЧСЪШ У ОЙНЙ Ч ПФДЕМШОЩИ НЕУФБИ, РПЧЕТИОПУФШ РТПФПРМБУФБ НЕЦДХ ЬФЙНЙ ФПЮЛБНЙ ЙНЕЕФ ЧПЗОХФХА ЖПТНХ. оБ ЬФПН ЬФБРЕ РМБЪНПМЙЪ ОБЪЩЧБАФ ЧПЗОХФЩН (ТЙУ. 10, ч).

    рПУФЕРЕООП РТПФПРМБУФ ПФТЩЧБЕФУС ПФ ЛМЕФПЮОЩИ УФЕОПЛ РП ЧУЕК РПЧЕТИОПУФЙ Й РТЙОЙНБЕФ ПЛТХЗМХА ЖПТНХ. фБЛПК РМБЪНПМЙЪ ОПУЙФ ОБЪЧБОЙЕ ЧЩРХЛМПЗП (ТЙУ. 10, з ).

    еУМЙ Х РТПФПРМБУФБ УЧСЪШ У ЛМЕФПЮОПК УФЕОЛПК Ч ПФДЕМШОЩИ НЕУФБИ УПИТБОСЕФУС, ФП РТЙ ДБМШОЕКЫЕН ХНЕОШЫЕОЙЙ ПВЯЕНБ Ч ИПДЕ РМБЪНПМЙЪБ РТПФПРМБУФ РТЙПВТЕФБЕФ ОЕРТБЧЙМШОХА ЖПТНХ. рТПФПРМБУФ ПУФБЕФУС УЧСЪБООЩН У ПВПМПЮЛПК НОПЗПЮЙУМЕООЩНЙ ОЙФСНЙ зЕИФБ. фБЛПК РМБЪНПМЙЪ ОПУЙФ ОБЪЧБОЙЕ УХДПТПЦОПЗП (ТЙУ. 10, д).

    рТЙ ДМЙФЕМШОПН ОБИПЦДЕОЙЙ ЛМЕФПЛ Ч ТБУФЧПТЕ ОЙФТБФБ ЛБМЙС (15 НЙО. Й ВПМЕЕ) ГЙФПРМБЪНБ ОБВХИБЕФ Ч ХДМЙОЕООЩИ ЛМЕФЛБИ, ФБН, ЗДЕ РТПФПРМБУФ ОЕ ЛБУБЕФУС ЛМЕФПЮОЩИ УФЕОПЛ, ПВТБЪХАФУС ФБЛ ОБЪЩЧБЕНЩЕ ЛПМРБЮЛЙ ГЙФПРМБЪНЩ. фБЛПК РМБЪНПМЙЪ ОПУЙФ ОБЪЧБОЙЕ ЛПМРБЮЛПЧПЗП (ТЙУ. 10, е).

    тЙУ. 10. рМБЪНПМЙЪ ТБУФЙФЕМШОПК ЛМЕФЛЙ:

    б — ЛМЕФЛБ Ч УПУФПСОЙЙ ФХТЗПТБ; в — ХЗПМЛПЧЩК; ч — ЧПЗОХФЩК; з — ЧЩРХЛМЩК; д — УХДПТПЦОЩК; е — ЛПМРБЮЛПЧЩК.

    1 — ПВПМПЮЛБ, 2 — ЧБЛХПМШ, 3 — ГЙФПРМБЪНБ, 4 — СДТП, 5 — ОЙФЙ зЕИФБ.

    еУМЙ РМБЪНПМЙЪЙТПЧБООХА ЛМЕФЛХ РПНЕУФЙФШ Ч ЗЙРПФПОЙЮЕУЛЙК ТБУФЧПТ. ЛПОГЕОФТБГЙС ЛПФПТПЗП НЕОШЫЕ ЛПОГЕОФТБГЙЙ ЛМЕФПЮОПЗП УПЛБ, ЧПДБ ЙЪ ПЛТХЦБАЭЕЗП ТБУФЧПТБ ВХДЕФ ДЙЖЖХОДЙТПЧБФШ ЧОХФТШ ЧБЛХПМЙ. ч ТЕЪХМШФБФЕ ХЧЕМЙЮЕОЙС ПВЯЕНБ ЧБЛХПМЙ РПЧЩУЙФУС ДБЧМЕОЙЕ ЛМЕФПЮОПЗП УПЛБ ОБ ГЙФПРМБЪНХ, ЛПФПТБС ОБЮЙОБЕФ РТЙВМЙЦБФШУС Л УФЕОЛБН ЛМЕФЛЙ, РПЛБ ОЕ РТЙНЕФ РЕТЧПОБЮБМШОПЕ РПМПЦЕОЙЕ — РТПЙЪПКДЕФ ДЕРМБЪНПМЙЪ .

    иПД ТБВПФЩ

    ъБДБОЙЕ 1. тБУУНПФТЕФШ ЛМЕФЛЙ МЙУФБ ЬМПДЕЙ, ОБИПДСЭЙЕУС Ч УПУФПСОЙЙ ФХТЗПТБ Й ЪБТЙУПЧБФШ.

    рПУМЕДПЧБФЕМШОПУФШ ТБВПФЩ. гЕМЩК МЙУФ ЬМПДЕЙ (Elodea canadensis ) РПМПЦЙФШ ОБ РТЕДНЕФОПЕ УФЕЛМП Ч ЛБРМА ЧПДЩ, ОБЛТЩФШ ЕЗП РПЛТПЧОЩН УФЕЛМПН. оБ РТЕРБТБФЕ ОБКФЙ ФПОЛЙК ХЮБУФПЛ, ЗДЕ ИПТПЫП ЧЙДОЩ ЛМЕФЛЙ. рТЕРБТБФ ТБУУНПФТЕФШ РТЙ НБМПН Й ВПМШЫПН ХЧЕМЙЮЕОЙСИ НЙЛТПУЛПРБ. пВТБФЙФШ ЧОЙНБОЙЕ ОБ ФП, ЮФП ГЙФПРМБЪНБ РТЙЦБФБ Л ЛМЕФПЮОЩН УФЕОЛБН. лМЕФЛЙ ОБИПДСФУС Ч УПУФПСОЙЙ РПМОПЗП ОБУЩЭЕОЙС ЧПДПК — УПУФПСОЙЕ ФХТЗПТБ. ъБТЙУПЧБФШ ПФДЕМШОХА ЛМЕФЛХ, ПВПЪОБЮЙЧ ПУОПЧОЩЕ ЛПНРПОЕОФЩ (ТЙУ. 10, б).

    ъБДБОЙЕ 2. рТПОБВМАДБФШ СЧМЕОЙЕ РМБЪНПМЙЪБ Ч ЛМЕФЛБИ МЙУФБ ЬМПДЕЙ. пРТЕДЕМЙФШ ЖПТНЩ РМБЪНПМЙЪБ. уДЕМБФШ ТЙУХОЛЙ.

    рПУМЕДПЧБФЕМШОПУФШ ТБВПФЩ. уОСЧ РТЕРБТБФ (ЙЪ ЪБДБОЙС 1) УП УФПМЙЛБ НЙЛТПУЛПРБ, ЧРМПФОХА Л РПЛТПЧОПНХ УФЕЛМХ ОБОЕУФЙ ОБ РТЕДНЕФОПЕ УФЕЛМП ЛБРМА 6-8% ТБУФЧПТБ УЕМЙФТЩ (KNO 3 ) — ВПМЕЕ ЛПОГЕОФТЙТПЧБООПЗП, ЮЕН ТБУФЧПТ ЧЕЭЕУФЧ, УПДЕТЦБЭЙИУС Ч ЧБЛХПМСИ. у ДТХЗПК УФПТПОЩ ОБ РТЕДНЕФОПЕ УФЕЛМП ЧРМПФОХА Л РПЛТПЧОПНХ УФЕЛМХ РПМПЦЙФШ РПМПУЛХ ЖЙМШФТПЧБМШОПК ВХНБЗЙ, ЛПФПТХА ОХЦОП ДЕТЦБФШ ДП ФЕИ РПТ, РПЛБ ТБУФЧПТ УЕМЙФТЩ ОЕ ЧПКДЕФ РПД РПЛТПЧОПЕ УФЕЛМП, ЪБНЕОЙЧ ЧПДХ. юЕТЕЪ 5-10 НЙОХФ ПВТБФЙФШ ЧОЙНБОЙЕ ОБ ПФТЩЧ ГЙФПРМБЪНЩ ПФ ПВПМПЮЛЙ ЛМЕФПЛ, Ф.Е. РМБЪНПМЙЪ. лПМРБЮЛПЧЩК РМБЪНПМЙЪ ОБУФХРБЕФ ЮЕТЕЪ 15 Й ВПМЕЕ НЙОХФ. ъБТЙУПЧБФШ ЖПТНЩ РМБЪНПМЙЪБ (ХЗПМЛПЧЩК, ЧПЗОХФЩК ЧЩРХЛМЩК, УХДПТПЦОЩК, ЛПМРБЮЛПЧЩК) (ТЙУ. 10, в-е). пВЯСУОЙФШ СЧМЕОЙЕ РМБЪНПМЙЪБ Й ЕЗП ЪОБЮЕОЙЕ Ч ЦЙЪОЙ ТБУФЕОЙК.

    ъБДБОЙЕ 3. рТПОБВМАДБФШ СЧМЕОЙЕ ДЕРМБЪНПМЙЪБ Ч ЛМЕФЛБИ ЬМПДЕЙ, Ф.Е. ЧЕТОХФШ Ч РЕТЧПОБЮБМШОПЕ УПУФПСОЙЕ РМБЪНПМЙЪЙТПЧБООХА ЛМЕФЛХ.

    рПУМЕДПЧБФЕМШОПУФШ ТБВПФЩ. уМЕДХЕФ ЪБНЕОЙФШ ТБУФЧПТ УЕМЙФТЩ ЧПДПК, ПФФСОХЧ ТБУФЧПТ ЖЙМШФТПЧБМШОПК ВХНБЗПК. пФНЕФЙФШ ЧПЪЧТБЭЕОЙЕ ГЙФПРМБЪНЩ Л ПВПМПЮЛЕ ЛМЕФЛЙ, Ф.Е. Ч ЕЕ ОПТНБМШОПЕ УПУФПСОЙЕ. дЕРМБЪНПМЙЪ РТПЙУИПДЙФ НЕДМЕООЕЕ, ЮЕН РМБЪНПМЙЪ. пВЯСУОЙФШ СЧМЕОЙЕ ДЕРМБЪНПМЙЪБ.

    лПОФТПМШОЩЕ ЧПРТПУЩ

    1. у ЛБЛЙНЙ УЧПКУФЧБНЙ ГЙФПРМБЪНЩ Й ЧБЛХПМЙ УЧСЪБОЩ ПУНПФЙЮЕУЛЙЕ СЧМЕОЙС ЛМЕФЛЙ?

    2. юФП ФБЛПЕ ФХТЗПТ, РМБЪНПМЙЪ, ДЕРМБЪНПМЙЪ?

    3. нПЦЕФ МЙ РТПЙУИПДЙФШ РМБЪНПМЙЪ Ч НЕТФЧПК ЛМЕФЛЕ?

    4. лБЛ НПЦОП ЧЩЪЧБФШ РМБЪНПМЙЪ Ч ЛМЕФЛБИ МЙУФБ ЬМПДЕЙ?

    Источник: http://e-lib.gasu.ru/eposobia/papina/bolprak/R_2_2.html

    Еще по теме:

    • Паутинный клещ на крыжовнике как бороться Вредитель поражает виноград довольно часто. Паутинный клещ на винограде — как бороться? Методы борьбы с этим вредителем включают в себя комплекс химических и агротехнических мер : Удаление сорняков. Это очень важный пункт, так как большинство видов паутинного […]
    • Пересадка смородины и крыжовника в октябре Оглавление Посадка крыжовника Лучшим временем для осенней посадки выступает последняя неделя сентября и первые недели октября. Однако ориентироваться нужно на погоду. Главное, чтобы первые заморозки наступили не ранее, чем через две недели, и не подморозили молодые […]
    • Орехи кешью полезные свойства для мужчин Польза и вред ореха кешью Орешки кешью имеют несколько названий — анакардиум западный, индийский орех, акажу. Они обладают ценнейшими для организма характеристиками – благотворно влияют на ЖКТ и кроветворную систему, способствуют усилению иммунитета, увеличивают […]
    • Подкормка для смородины и крыжовника весной Многие садоводы, которые занимаются выращиванием крыжовника, знают, что для получения хорошего урожая с большими ароматными и сладкими ягодами необходимо правильно применять удобрения для крыжовника. Крыжовник – не очень прихотливый кустарник, но все же требует […]
    • Каллистемон прутовидный кто сажал отзывы Каллистемон (лат. Callistemon) – вечнозеленые кустарники и небольшие деревья семейства Миртовые (Myrtaceae) . Естественным ареалом произрастания каллистемона являются Австралия и Новая Каледония. Эти растения растут в основном, в зависимости от вида, во влажных […]
    • Посадка рассады перцев и помидор в теплицу Выращивание рассады в теплицах: дельные советы по грамотному размещению и уходу Подготовка почвы заканчивается к маю. Если грамотно распланировать площадь, тогда можно продолжить посев холодостойких овощей, посадить лук. Размещение посадок организовывается так, чтобы […]
    • Можно ли употреблять сухие семена льна Семена льна — польза и вред. Как принимать семя льна Семена льна — полезные свойства и противопоказания Далее – омега-3-жирные кислоты. которые отвечают за целостность клеточных мембран (проще говоря, здоровые клетки – здоровый организм). Они не […]
    • Можно ли обрезать малину в конце октября Обрезка – один из важнейших моментов ухода за малиной. Если вы хотите, чтобы малиновые кусты в вашем саду каждый год были усыпаны ягодами, вам поможет правильная обрезка малины. Конечно, важны и полив, и подкормка, но без правильной обрезки хорошего (рекордного!) […]
    • Пион уклоняющийся лекарственные свойства Пион уклоняющийся Описание, размножение и ареал распространения бадана Многолетнее травянистое растение семейства пионовых (Paeoniaceae), высотой до 1 м и выше, с толстым многоглавым корневищем и крупными, 20-25 см длины, буро-коричневыми корнями с сильным […]
    • Нужно ли обрезать плетистую розу весной Плетистые розы. Ч.3. Обрезка роз Рассмотрим в качестве примера уход за четырьмя сортами роз, растущими уже длительное время на моём участке и относящимися к различным группам плетистых роз: 1. Dortmund - «Дортмунд». (Kordes, 1955 г). Сеянец х R. Kordesii. Бутоны […]